操作步骤： 
1. 取粉状干燥组织10-50 mg ，放入研钵，加入 500 μL Buffer CH1 ，常温下研磨，研磨至无明显可以肉眼观察到的颗粒状悬浮物，转移至2.0 mL 离心管中。
*可选: 加入 6μLβ-巯基乙醇，瞬时涡旋，确保菌团已分散。
2. 置于65 oC 水浴锅中，水浴15分钟，期间颠倒混匀2次。
*可选: 如果需要去除RNA，在温浴前加入 5 μL RNase A ，室温静置5分钟。
3. 加入 600 μL 氯仿 /异戊醇 (24:1)，涡旋混匀，12,000rpm离心10分钟。
4. 小心吸取 300 μL上清至一新的1.5 mL 离心管中，避免吸起沉淀。
5.  加入150 μL Buffer CH2 和 300 μL 无水乙醇，涡旋混匀，加入无水乙醇后可能会形成沉淀，这不影响DNA纯化。
6. 将DNA离心柱插入2.0 mL离心管中，将样品液（包括可能形成的沉淀）加入到离心柱中，10,000rpm离心 1 分钟，倒掉废液，将离心柱重新插入收集管中。
7. 加入 650 μL Buffer DWS（确保已加入无水乙醇），10,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉废液，将离心柱重新插入收集管中。
*Buffer DWS用无水乙醇稀释后使用。
8. 再加入650 μL Buffer DWS，13,000 rpm 离心1 分钟，倒掉废液，将离心柱重新插入收集管中。
9. 13,000 rpm开盖离心5 分钟，开盖离心有助于去除残留乙醇，乙醇的有效去除保证DNA的洗脱，否则影响下游实验。
10.将NDA离心柱插入1.5 mL离心管中，加入 65oC预热的50-200 μL Buffer ES ，静置2分钟，13,000 rpm 离心 1分钟 洗脱DNA。小的洗脱体积增加DNA 浓度但洗脱量少，不建议洗脱体积超过 200 μL 。
11. 再加100 μL Buffer ES洗脱， 第二次洗脱可收获另外20%的DNA
*离心前60℃-70℃温浴5分钟，有利于增加DNA浓度。
基因组DNA的得率会因为样品的种类和质量有所不同， 一般50mg的粉状干燥组织可以得到10-50 μg DNA ， A260/A280 比值在1.7-1.9。
Sample
Plant Wet/Dry Tissue
Type
Spin column
Operation
Spin
Application
PCR, Restriction Digestion, and Hybridization techniques
http://www.hyqbio.com.cn/index.php?case=archive&act=show&aid=31