操作步骤：
1. 取适量植物组织（新鲜组织不超过100mg或干燥组织不超过50mg），放入研钵，加入900 μL Buffer H1，研磨至无明显可以肉眼观察到的颗粒状悬浮物，转移至2.0 mL 离心管中。
可选: 加入 10μLβ-巯基乙醇，瞬时涡旋，确保菌团已分散，可有效提取DNA 。
2. 置于65 oC 水浴锅中，水浴10 分钟（干燥组织可酌情延长时间），期间颠倒混匀几次。可选:如果需要去除RNA，温浴前加入 5 μLRNase A 。
3. 加入140 μL Buffer H2 ，涡旋振荡 10秒混匀，13,000 rpm 离心10分钟。
4. 小心吸取上清至一新的 2.0 mL 离心管中，加入0.5 倍体积的Buffer H3 和0.75 倍体积的无水乙醇 (例如:600 μL 上清 +300 μL H3+450 μL 无水乙醇)，涡旋10秒混匀。
5. 将DNA离心柱插入2.0 mL离心管中，将样品液（包括可能形成的沉淀）加入到离心柱中， 13,000 rpm 离心1分钟，倒掉废液，将离心柱重新插入收集管中。
6. 加入650 μL Buffer DWS（确保已加入无水乙醇），13,000 rpm 离心 1分钟，倒掉废液，将离心柱重新插入收集管中。
*Buffer DWS用无水乙醇稀释后使用。
7. 再加入650 μL Buffer DWS，13,000 rpm 离心1 分钟，倒掉废液，将离心柱重新插入收集管中。
8.  13,000 rpm开盖离心5 分钟，开盖离心有助于去除残留乙醇，乙醇的有效去除保证DNA的洗脱，否则影响下游实验。
9. 将NDA离心柱插入1.5 mL离心管中，加入 65oC预热的50-200 μL Buffer ES (或无菌水) ，静置2分钟，13,000 rpm 离心 1分钟 洗脱DNA。小的洗脱体积增加DNA 浓度但洗脱量少，不建议洗脱体积超过 200 μL 。
10.  再加100 μL Buffer ES洗脱， 第二次洗脱可收获另外20%的DNA。
*离心前60℃-70℃温浴5分钟，有利于增加DNA浓度。
基因组DNA的得率会因为样品的种类和质量有所不同， 一般100mg的新鲜组织可以得到10-50 μg DNA ， A260/A280 比值在1.7-1.9。

Sample

Plant Tissue

Type

Spin column

Expected yield

The binding capacity per column is 40 μg of DNA

Operation

Spin

Application

PCR, Southern Blotting, and Restriction Digestion